<abstract xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml"> In the present studies, an attempt has been made to develop a method of liquid nitrogen preservation of plant explants propagated in vitro in the laboratory of the Department of Ornamental Plants, of Agricultural University in Kraków: shoot apical and axillary meristems of Rosa ‘New Dawn’, somatic embryos of snowdrops Galanthus nivalis L. and G. elwesii Hook, and gametophyte of Phlebodium aureum (L.) J. Sm. (golden polypody). After encapsulation of plant material, it was dehydrated by quick method (capsules were placed in liquid media containing 0.75 M sucrose for 18 h) or by gradual method (capsules were transferred to liquid solutions of media with increasing sucrose concentrations from 0.3 M to 1 M for consecutive 7 days). Moreover, some explants for cryopreservation were treated with the medium containing elevated sucrose level (0.25 M) for 8 weeks</abstract>

In the present studies, an attempt has been made to develop a method of liquid nitrogen preservation of plant explants propagated in vitro in the laboratory of the Department of Ornamental Plants, of Agricultural University in Kraków: shoot apical and axillary meristems of Rosa ‘New Dawn’, somatic embryos of snowdrops Galanthus nivalis L. and G. elwesii Hook, and gametophyte of Phlebodium aureum (L.) J. Sm. (golden polypody). After encapsulation of plant material, it was dehydrated by quick method (capsules were placed in liquid media containing 0.75 M sucrose for 18 h) or by gradual method (capsules were transferred to liquid solutions of media with increasing sucrose concentrations from 0.3 M to 1 M for consecutive 7 days). Moreover, some explants for cryopreservation were treated with the medium containing elevated sucrose level (0.25 M) for 8 weeks

Employment of encapsulation-dehydration method for liquid nitrogen cryopreservation of ornamental plant explants propagated <italic>in vitro</italic>

Department of Ornamental Plants Faculty of Horticulture

Folia Horticulturae

This work is licensed under the Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 3.0 License.

Employment of encapsulation-dehydration method for liquid nitrogen cryopreservation of ornamental plant explants propagated 

<trans-abstract xml:lang="pl" xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml"> W przeprowadzonych badaniach podjęto próbę opracowania sposobu przechowywania w ciekłym azocie metodą kapsułkowania - dehydratacji eksplantatów pochodzących z roślin rozmnażanych techniką in vitro w laboratorium Katedry Roślin Ozdobnych Akademii Rolniczej w Krakowie: merystemów wierzchołkowych i bocznych róż Rosa ‘New Dawn’, zarodków somatycznych śnieżyczek Galanthus nivalis L. i G. elwesii Hook oraz przedrośli paproci Phlebodium aureum (L.) J. Sm. Po kapsułkowaniu poddano materiał roślinny dehydratacji metodą szybką (umieszczenie kapsułek w pożywkach płynnych o stężeniu sacharozy 0,75 M na 18 godzin) lub stopniową, (kapsułki przenoszono do płynnych pożywek, o wzrastającym stężeniu sacharozy, od 0,3 M do 1 M, przez kolejne 7 dni). Ponadto część eksplantatów pozyskiwanych do krioprezerwacji hartowano na pożywce z podwyższonym stężeniem sacharozy (0,25 M) przez 8 tygodni.Uzyskane wyniki wskazują, że przeżywalność tkanki roślinnej po mrożeniu w ciekłym azocie zależy od rodzaju użytego materiału roślinnego: merystemy wierzchołkowe róż regenerowały kalus, a merystemy boczne nie przetrwały mrożenia; gametofity paprotki złocistej regenerowały namnażając gametofit; zarodki somatyczne śnieżyczek, choć nie zmieniły wyglądu (nie czerniały) nie podjęły regeneracji. Natomiast nacinanie kapsułek po mrożeniu nie wpłynęło na regenerację poddanych krioprezerwacji eksplantatów roślinnych.Wykazano, że zastosowanie powolnej metody dehydratacji podczas przygotowywania kapsułek z materiałem roślinnym do krioprezerwacji pozwola - po wyjęciu z ciekłego azotu - na uzyskanie żywej tkanki kalusowej róży ‘New Dawn’ i namnażających się gametofitów Phlebodium aureum. Pąki boczne róży i gametofity paprotki złocistej przygotowane do krioprezerwacji metodą szybkiej dehydratacji nie przeżywają mrożenia.</trans-abstract>

W przeprowadzonych badaniach podjęto próbę opracowania sposobu przechowywania w ciekłym azocie metodą kapsułkowania - dehydratacji eksplantatów pochodzących z roślin rozmnażanych techniką in vitro w laboratorium Katedry Roślin Ozdobnych Akademii Rolniczej w Krakowie: merystemów wierzchołkowych i bocznych róż Rosa ‘New Dawn’, zarodków somatycznych śnieżyczek Galanthus nivalis L. i G. elwesii Hook oraz przedrośli paproci Phlebodium aureum (L.) J. Sm. Po kapsułkowaniu poddano materiał roślinny dehydratacji metodą szybką (umieszczenie kapsułek w pożywkach płynnych o stężeniu sacharozy 0,75 M na 18 godzin) lub stopniową, (kapsułki przenoszono do płynnych pożywek, o wzrastającym stężeniu sacharozy, od 0,3 M do 1 M, przez kolejne 7 dni). Ponadto część eksplantatów pozyskiwanych do krioprezerwacji hartowano na pożywce z podwyższonym stężeniem sacharozy (0,25 M) przez 8 tygodni.Uzyskane wyniki wskazują, że przeżywalność tkanki roślinnej po mrożeniu w ciekłym azocie zależy od rodzaju użytego materiału roślinnego: merystemy wierzchołkowe róż regenerowały kalus, a merystemy boczne nie przetrwały mrożenia; gametofity paprotki złocistej regenerowały namnażając gametofit; zarodki somatyczne śnieżyczek, choć nie zmieniły wyglądu (nie czerniały) nie podjęły regeneracji. Natomiast nacinanie kapsułek po mrożeniu nie wpłynęło na regenerację poddanych krioprezerwacji eksplantatów roślinnych.Wykazano, że zastosowanie powolnej metody dehydratacji podczas przygotowywania kapsułek z materiałem roślinnym do krioprezerwacji pozwola - po wyjęciu z ciekłego azotu - na uzyskanie żywej tkanki kalusowej róży ‘New Dawn’ i namnażających się gametofitów Phlebodium aureum. Pąki boczne róży i gametofity paprotki złocistej przygotowane do krioprezerwacji metodą szybkiej dehydratacji nie przeżywają mrożenia.

Employment of encapsulation-dehydration method for liquid nitrogen cryopreservation of ornamental plant explants propagated

In the present studies, an attempt has been made to develop a method of liquid nitrogen preservation of plant explants propagated in vitro in the laboratory of...

Employment of encapsulation-dehydration method for liquid nitrogen cryopreservation of ornamental plant explants propagated in vitro

Published Online: Aug 01, 2013

Page range: 61 - 71

DOI: https://doi.org/10.2478/fhort-2013-0106

Keywords
cold storage, rose, snowdrops, golden polypody, in vitro cultures

© 2008 Bożena Pawłowska, published by Versita

This work is licensed under the Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 3.0 License.

Employment of encapsulation-dehydration method for liquid nitrogen cryopreservation of ornamental plant explants propagated in vitro

Published Online: Aug 01, 2013

Page range: 61 - 71

DOI: https://doi.org/10.2478/fhort-2013-0106

Keywordscold storage, rose, snowdrops, golden polypody, in vitro cultures

© 2008 Bożena Pawłowska, published by Versita

This work is licensed under the Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 3.0 License.

Keywords
cold storage, rose, snowdrops, golden polypody, in vitro cultures